上海洪富儀器儀表有限公司


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        產品詳情
        • 產品名稱:FP100MAX-W手持式葉綠素熒光測量儀

        • 產品型號:FP100MAX-W
        • 產品廠商:捷克PSI
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        • 產品文檔:
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        簡單介紹:
        FP100MAX-W手持式葉綠素熒光測量儀 FP100MAX-W手持式葉綠素熒光測量儀采用調試式熒光測量技術,可設置多種參數,方便測量多種植物葉綠素熒光。外觀小巧,方便攜帶,設計新穎,操作簡單,經濟耐用,精度高穩定性好。自帶暗適應葉夾,容易操作。
        詳情介紹:
        FP100MAX-W手持式葉綠素熒光測量儀
        FP100MAX-W手持式葉綠素熒光測量儀采用調試式熒光測量技術,可設置多種參數,方便測量多種植物葉綠素熒光。外觀小巧,方便攜帶,設計新穎,操作簡單,經濟耐用,精度高穩定性好。自帶暗適應葉夾,容易操作。
         
        應用領域
        適用于光合作用研究和教學,植物及分子生物學研究,農業、林業,生物技術領域等。研究內容涉及光合活性、脅迫響應、農藥藥效測試、突變等。FP100MAX-W手持式葉綠素熒光測量儀
        • 植物光合特性和代謝紊亂篩選           
        • 生物和非生物脅迫的檢測
        • 植物抗脅迫能力或者易感性研究
        • 代謝混亂研究
        • 長勢與產量評估
        • 植物——微生物交互作用研究
        • 植物——原生動物交互作用研究 
         
        FP100MAX-W手持式葉綠素熒光測量儀典型樣品
        • 植物葉片
        • 其它
         
        工作原理
        利用調制式熒光測量技術,采用LED光源,選擇儀器內置的給光方案測量并計算葉綠素熒光的各種參數。
         
        FP100MAX-W手持式葉綠素熒光測量儀功能特點:實驗過程和測量參數
        • Ft:瞬時葉綠素熒光、暗適應完成后Ft=Fo
        • QY:光量子效率,表示光系統II 的效率,等于Fv/Fm(暗適應完成的樣品)或Fv’/Fm’ (光適應完成的樣品)
        • OJIP:葉綠素熒光瞬時OJIP曲線是反應光合作用過程中植物生理時間過程的重要信號。
        • NPQ:非光化學淬滅,表示光合作用中葉綠素吸收光能后以熱形式散失掉的部分。
        • 光曲線:Qy對不同光強的適應曲線。
        • PAR測量:可在熒光儀上顯示PAR值,可計算20次檢測值的平均。
        • 另外還具有GPS定位功能

         
        技術參數FP100MAX-W手持式葉綠素熒光測量儀
         
        <>·測量光:藍光(可選紅光或白光)光化學光和飽和光:0–3000μmol (photons).m-2.s-1可調波長檢測范圍:697nm-750nm                             BOIS:可升級通訊:可選藍牙、USB或串行接口存儲:4M 數據存儲:100,000個顯示:2 x 8字符黑白液晶屏鍵盤:密封防水設計2鍵自動關機:5分鐘無操作電源:4 AAA堿性電池或充電電池電池壽命:持續測量70 h低電報警尺寸:120 x 57 x 30 mm; 4.7" x 2.2" x 1.2" 重量:180 g, 6.5 oz 操作條件:溫度:0 ~ 55 oC;相對濕度:0 ~ 95 %非冷凝存儲條件:溫度:-10 to +60 oC;相對濕度:0 ~ 95 %非冷凝軟件:FluorPen2.0, Windows 2000,XP或更高*,實時顯示和遙控,植入GPS繪圖,EXCEL輸出PAR傳感器:讀數單位μmol(photons)/m2.s,可顯示讀數,檢測范圍400-700 nm

         
        配置型號指南:
        ·標準配置——FP100max-W + GPS模塊 + PAR傳感器:功能完備
        ·簡化配置——FP100max-W:無PAR數據+ 無GPS數據
         
        產地: 歐洲
         
        參考文獻

        Harding S.A., Jarvie M.M., Lindroth R.L. and Tsai Ch-J. (2009): A comparative analysis of phenylpropanoid metabolism, N utilization, and carbon partitioning in fast- and slow-growing Populus hybrid clones. J. Exp. Botany, Vol. 60 (12), pp. 3443-3452.
        Klem K. and Bajerova E. (2008): Adjustment of herbicide dose in sugar beet based on non-invasive chlorophyll fluorescence measurements. AgEng 2008 Conference, Hersonissos, Crete.
         
        附:參數列表
        Bckg = background
        Fo: = F50μs; fluorescence intensity at 50 μs
        Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)
        Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)
        Fm: = maximal fluorescence intensity
        Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)
        Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)
        Fm / Fo = Fm / Fo
        Fv / Fo = Fv / Fo
        Fv / Fm = Fv / Fm
        Mo = TRo / RC - ETo / RC
        Area = area between fluorescence curve and Fm
        Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)
        Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)
        N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA
        Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)
        Phi_o = I - Vj
        Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o
        Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)
        Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)
        ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)
        TRo / RC = Mo . (I / Vj)
        ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)
        DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)
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